正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

活性氧(Reactive oxygen species, ROS)包括超氧自由基、过氧化氢、及其下游产物过氧化 物和羟化物等，研究表明，机体 95％以上的活性氧(ROS)都来自于线粒体，其失衡所致 的氧化应激与细胞生长增殖、发育分化、衰老和凋亡以及许多生理和病理过程有关。

正常情况下，细胞内抗氧化防御系统与氧自由基处于平衡状态，细胞内活性氧(ROS) 水平维持在较低的生理范围；在病理情况下， 细胞内抗氧化系统与氧自由基的平衡被打破， 细胞内活性氧水平过多， 就可破坏线粒体酶类、脂类和核酸， 使机体出现氧化应激，同时， 活性氧还可攻击线粒体 DNA 产生氧化损伤， 导致线粒体 ATP 合成减少、线粒体膜电位破坏 等结构和功能变化。

因此， 通过检测活性氧的变化来判断线粒体的功能是否正常具有重要意义。 测定原理：

荧光探针-还原型二氯荧光素 (2', 7'-dichlorodihy drofluorescin diacetate, DCFH-DA)可扩散通 过线粒体膜， 在线粒体内被酯酶水解， 形成无荧光的 DCFH ，DCFH 迅速与 ROS 反应生成 荧光物—氧化型二氯荧光素(2', 7'-dichlo rofluorescin, DCF) 。  根据上述原理设计了利用荧光 法直接定量检测线粒体 ROS 产生速率的方法。将荧光强度随时间变化的数据点拟合， 线性

回归直线斜率与 ROS 产生的速率呈正比。

需自备的仪器和用品：

多功能酶标仪、恒温培养箱、分析天平、可调式移液器、冰、蒸馏水。

试剂组成和配制：

试剂一：液体 120 mL×1 瓶, 4℃保存；

试剂二：液体 50 mL×1 瓶， 4℃保存；

试剂三：液体 1.5 mL×1 瓶,-20℃保存；

试剂四：粉剂×1瓶，4℃保存； 临用前加入 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂五：粉剂×1瓶，4℃保存； 临用前加入 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂六：粉剂×1瓶，4℃保存； 临用前加入 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂七：液体×1瓶,  避光-20℃保存；临用前用试剂二稀释 300 倍后使用； 线粒体提取：

1、准确称取 0. 1g 组织或收集 500 万细胞，加入 1mL 试剂一和 10uL  试剂三， 用冰浴匀浆器 或研钵匀浆。

2 、将上述匀浆液于 600g  (离心率)，4℃离心 5min。

3、弃沉淀， 将上清液移至另一离心管中，11000g ，4℃离心 10min。

4 、弃上清， 沉淀中加入 200μL 试剂二重悬。 测定步骤：

1、 多功能酶标仪预热 30min 以上， 调节激发光 499nm ，发射光 521nm。

2.  在黑色不透光 96 孔板中加入下列试剂

孵育完成后，在 37℃恒温下测定 10min 内荧光强度，激发波长 499nm，发射波长 521nm， 记录 10min 内的荧光值变化。

ROS 产生速率计算：

对采样数据点即荧光强度随时间的变化进行线性回归拟合处理 ,计算出回归系数, 即直线斜 率 (k)。实际线粒体 ROS 产生速率等于样本荧光强度随时间变化的数据点线性回归直线斜 率(k 测定)减去本底荧光强度随时间变的数据点线性回归直线斜率 (k 空白)。

(1)按样本鲜重计算：每 g 组织线粒体每秒钟荧光单位的变化, 即 u/ s/g  鲜重

ROS 产生速率(u/ s/g 鲜重)=(k 测定-k 空白)/(V 样÷V 总×W) =10×(k 测定-k 空白)÷W

(2)按样本蛋白浓度计算：每毫克蛋白线粒体每秒钟荧光单位的变化 u/ s/mg prot。

ROS 产生速率(u/ s/ mg prot)=(k 测定-k 空白)/(V 样÷V 总×Cpr) =10×(k 测定-k 空白)÷Cpr

V 样：加入样本体积， 0.02 mL；V 样总： 悬液体积， 0.2 mL；W:  样本鲜重， g；Cpr:  样本 蛋白浓度，mg/mL。